Поиск оптимальных способов забора крови у лабораторных крыс в условиях хронического опыта
https://doi.org/10.31043/2410-2733-2022-4-56-60
Аннотация
Цель: выявление оптимальных способов взятия крови у крыс в рамках хронического опыта.
Материалы и методы. Были проведены две серии исследований, в первой из них проводилась сравнительная оценка диаметра иглы для венепункции. Во второй серии определялся объём крови, получаемой с антикоагулянтом и без него. Эксперимент проводился на крысах самцах линии Wistar, в качестве материалов использовали иглы-бабочки с гибким катетером различных размеров – 23G, 24G и 25G, шприц объёмом 2 мл и гепарин, разведённый с физиологическим раствором в соотношении 1:10 (500 ЕД/мл).
Результаты. В научном эксперименте установлено, что оптимальным размером иглы -бабочки для забора крови у лабораторных крыс является G-24 (диаметр иглы 0,55 мм). Иглы с меньшим диаметром не подходят для забора крови, так как в их просвете образуется кровяной сгусток, что существенно уменьшает объём отбираемой крови. Катетеры-бабочки с большим диаметром иглы (диаметр иглы 0,6 мм) создают эффект тампонады сосуда. Результаты второй серии опытов свидетельствуют о значительном увеличении объёма получаемой крови с применением антикоагулянта нежели без него. Это подтверждается в межгрупповом сравнении количества крови, полученного у крыс первой группы (с применением антикоагулянта) на 46,5 % превышает показатель второй группы (без использования антикоагулянта) (P<0,05).
Заключение. Проведённые исследования свидетельствуют о том, что при заборе крови у крыс из хвостовой вены оптимальным размером иглы-бабочки являлся 24G. Применение раствора гепарина в концентрации 500 Ед/мл позволяло получить от крыс объём крови на 46,5 % выше, чем без применения антикоагулянта. Использование на практике данного метода (шприца и катетера-бабочки размером G-24 совместно с антикоагулянтом) актуализирует многократный забор крови в хроническом эксперименте, уменьшает трудоемкость процесса взятия крови и минимизирует травматизацию лабораторных животных.
Ключевые слова
Об авторах
С. В. ВасильеваРоссия
Васильева Светлана Владимировна — кандидат ветеринарных наук.
196084, Санкт-Петербург, ул. Черниговская, д. 5
Л. Ю. Карпенко
Россия
Карпенко Лариса Юрьевна — доктор биологических наук, профессор.
196084, Санкт-Петербург, ул. Черниговская, д. 5
О. А. Душенина
Россия
Душенина Ольга Александровна — кандидат биологических наук.
196084, Санкт-Петербург, ул. Черниговская, д. 5
Список литературы
1. Сорокина А. В. Опыт проведения клинико-лабораторных исследований в доклинической оценке безопасности лекарств (часть 2: биохимические и патоморфологические исследования) / А. В. Сорокина, С. В. Алексеева, Н. В. Еремина, А. Д. Дурнев // Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. Регуляторные исследования и экспертиза лекарственных средств. – 2019. – Т. 9. – № 4. – С. 272-279. doi 10.30895/1991-2919-2019-9-4-272-279.
2. СанПиН 3.3686-21. Санитарно-эпидемиологические требования по профилактике инфекционных болезней: издание официальное: утвержден главным государственным санитарным врачом Российской Федерации 28.01.2021: введен 01.09.2021. – Москва: ДЕАН, 2021-1092 с.
3. ГОСТ 33215-2014 Руководство по содержанию и уходу за лабораторными животными. Правила оборудования помещений и организации процедур (Переиздание) : межгос. Стандарт: изд. Офиц.: дата введения 2016-07-01. – Москва: Стандартинформ, 2019. – 13 с.
4. Бондарева Е. Д. Нормативно-правовое регулирование деятельности питомников и экспериментально-биологических клиник (вивариев) / Е. Д. Бондарева, М. Н. Макарова, М. А. Ковалева [и др.] // Лабораторные животные для научных исследований. – 2018. – № 4. – С. 100-115. doi 10.29296/2618723X-2018-04-08.
5. Клиническая лабораторная диагностика: Учебник в двух томах / А. В. Бугров, В. В. Долгов, С. П. Казаков [и др.]. – Москва: ООО «Лабдиаг», 2017. – 464 с. – ISBN 978-5-7249-2608-9.
6. Васильев, А. Н. Качественные доклинические исследования - необходимый этап разработки и внедрения в клиническую практику новых лекарственных препаратов / А. Н. Васильев // Антибиотики и химиотерапия. – 2012. – Т. 57. – № 1-2. – С. 41-49.
7. Дьякон А. В. Метод забора крови у животных / А. В. Дьякон, И. С. Хрыкина, А. А. Хегай [и др.] // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. – 2013. – № 11-2. – С. 84-85.
8. Taraskin A. Blood biochemical markers in Saanen goats depending on month of pregnancy / A. Taraskin, A. Bakhta, L. Karpenko [et al.] // FASEB Journal. – 2021. – Vol. 35. – No S1. – P. 05198. doi 10.1096/fasebj.2021.35.S1.05198.
9. Патент № 2719912 C1 Российская Федерация, МПК G09B 23/28. Способ забора крови у крыс из периферических вен хвоста: № 2019121113: заявл. 03.07.2019: опубл. 23.04.2020 / П. Д. Тимкин, М. Е. Кропотова, Н. И. Петренко; заявитель Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Амурская государственная медицинская академия" Министерства здравоохранения Российской Федерации.
10. Карпенко, Л. Ю. Особенности показателей белой крови при хроническом респираторном синдроме крыс / Л. Ю. Карпенко, А. И. Козицына, П. А. Полистовская // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. – 2021. – № 1. – С. 120-122. doi 10.17238/issn2072-6023.2021.1.120.
Рецензия
Для цитирования:
Васильева С.В., Карпенко Л.Ю., Душенина О.А. Поиск оптимальных способов забора крови у лабораторных крыс в условиях хронического опыта. Генетика и разведение животных. 2022;(4):56-60. https://doi.org/10.31043/2410-2733-2022-4-56-60
For citation:
Vasilyeva S., Karpenko L., Dushenina O. Search for optimal methods of blood sampling from laboratory rats under conditions of chronic experiment. Genetics and breeding of animals. 2022;(4):56-60. (In Russ.) https://doi.org/10.31043/2410-2733-2022-4-56-60