Корреляционный анализ антропометрических показателей и макроморфологии лимфоидной ткани кишечника у самок сеголетков рыси (Lynx lynx)

Цель: изучение взаимосвязи между морфометрическими параметрами лимфоидной ткани кишечника и антропометрическими показателями (масса, длина тела) у молодых самок евразийской рыси (Lynx lynx).

Материалы и методы. В анализ включены данные 12 особей, добытых в рамках законной охоты и научного отстрела в 2023–2024 гг. на территории Кировской области и сопредельных регионов. Для изучения морфометрии кишечника лимфоидной ткани использовались образцы тонкого и толстого кишечника, в которых проводились измерения количества, размеров и пространственного распределения лимфоидных узелков и бляшек. Антропометрические параметры (масса тела с точностью до 5 г, длина тела) регистрировали до разделки туш.

Результаты исследования выявили ряд значимых закономерностей. Во-первых, подтверждена общебиологическая связь между массой и длиной тела (ρ=0,800, p=0,002). Во-вторых, обнаружена сильная корреляция между площадью двенадцатиперстной кишки и массой тела (ρ=1,000, p<0,01). При этом выявлены отрицательные корреляции: масса тела связана с уменьшением количества лимфоидных узелков в двенадцатиперстной кишке (ρ=-0,800, p=0,002), а длина тела — с сокращением площади подвздошной кишки (ρ=-0,800, p=0,002). Возрастная динамика лимфоидных структур у рыси проявляется в снижении количества узелков (ρ=-0,800) и бляшек (ρ=-0,775) в двенадцатиперстной кишке на фоне увеличения расстояния между ними (ρ=0,800). Видовая специфика рыси проявляется в пространственном распределении лимфоидных структур: в тощей кишке обнаружена положительная корреляция площади узелков (ρ=0,800) и количества бляшек (ρ=0,632) с метаболической активностью, что характерно для адаптации к антигенной нагрузке в дикой среде. Морфометрический анализ выявил структурную реорганизацию лимфоидной ткани: уменьшение расстояния между узелками (ρ=-0,600) при одновременном росте их количества (ρ=0,600) указывает на уплотнение и оптимизацию пространственного расположения иммунных структур. Доминирование лимфоидных бляшек в двенадцатиперстной кишке (ρ=0,949, p<0,001) аналогично данным по псовым, у которых они составляют до 70 % лимфоидной массы проксимальных отделов. 

1. Соловей И. Пространственная структура и плотность популяции рыси Lynx lynx в Беларуси по данным анкетного опроса 2022 года / И. Соловей, В. Шакун, А. Ларчанка // Вестник зоологии. – 2023. – С. 150–154.

2. Palmero S. Demography of a Eurasian lynx (Lynx lynx) population within a strictly protected area in Central Europe / S. Palmero, L. Bufka, M. Gahbauer et al. // Scientific Reports. – 2021. – V. 11. – № 1. – P. 1–11. doi: 10.1038/s41598-021-99337-2.

3. Kubala J. Monitoring of Eurasian Lynx (Lynx lynx) in the Vepor Mountains and its importance for the national and European management and species conservation / J. Kubala, N. Guimarães, J. Brndiar et al. – 2019. – P. 1–21. doi: 10.13140/RG.2.2.23429.17125.

4. Najera F. Disease Surveillance during the Reintroduction of the Iberian Lynx (Lynx pardinus) in Southwestern Spain / F. Najera, R. Grande-Gómez, J. Peña et al. // Animals. – 2021. – V. 11. – № 2. – P. 547. doi: 10.3390/ani11020547.

5. Filip-Hutsch K. Endoparasites of Eurasian lynx (Lynx lynx) (Linnaeus, 1758) from an enclosure of Western Pomeranian Nature Society in Jablonowo / K. Filip-Hutsch, A. Demiaszkiewicz // Annals of Parasitology. – 2017. – V. 63. – № 1. – P. 33–36. doi: 10.17420/ap6301.82.

6. Valdmann H. Lynx (Lynx lynx) and wolf (Canis lupus) in the Baltic region: diets, helminth parasites and genetic variation / H. Valdmann // Tartu: Tartu University Press, 2007.

7. Stenseth N.C. Common dynamic structure of Canada lynx populations within three climatic regions / N. C. Stenseth, K. S. Chan, H. Tong et al // Science. – 1999. – V. 285. – № 5430. – P. 1071–1073. doi: 10.1126/science.285.5430.1071.

8. Карбасников А. А. Динамика численности рыси и зайца в Верховажском районе Вологодской области / А. А. Карбасников, Е. Б. Карбасникова, Е. С. Байдаков // Новые импульсы развития: вопросы научных исследований. – 2021. – № 2. – С. 118–122.

9. Панфилов А.Б. Топография лимфоидной ткани стенки тонкой кишки крупного рогатого скота и лосей / А. Б. Панфилов // Иппология и Ветеринария. – 2015. – № 1 (15). – С. 57–62.

10. Березина Ю. А. Интенсивность роста щенков красной лисицы типа огневка вятская / Ю. А. Березина, М. А. Кошурникова, О. Ю. Беспятых, и др. // Генетика и разведение животных. – 2023. – № 2. – С. 20–27. doi: 10.31043/2410-2733-2023-2-20-27.

11. Чикачев Р. А. Морфометрические показатели популяции рыси обыкновенной в Амурской области / Р. А. Чикачев, И. Е. Гусакова // Дальневосточный аграрный вестник. – 2021. – № 1 (57). – С. 61–69. doi: 10.24412/1999-6837-2021-1-61-69.

12. Романов Д. Е. Генетический контроль регуляции соматического роста у млекопитающих / Д.Е. Романов // Успехи современной биологии. – 2020. – Т. 140. – № 6. – С. 565–573. doi: 10.31857/S004213242006006X.

13. Калашников И. Н. Филогенез систем органов хордовых животных / И. Н. Калашников, Т. Г. Щербатюк – 2017. – 130 с.

14. McDonald K. G. Aging impacts isolated lymphoid follicle development and function / K. G. McDonald, M. R. Leach, C. Huang et al. // Immun Ageing. – 2011. – V. 8(1):1. doi: 10.1186/1742-4933-8-1.

15. Булекбаева Л. Э. Микроструктура лимфоидных узелков тонкого кишечника мышей после космического полета и экспериментов / Л. Э. Булекбаева, Е. А. Ильин, Г. А. Демченко и др. // Международный журнал экспериментального образования. – 2015. – № 11–1. – С. 102–103.

16. McGrosky A. Gross intestinal morphometry and allometry in Carnivora / A. McGrosky, A. Navarrete, K. Isler et al // Eur J Wildl Res. – 2016. – V. 62. – P. 395–405. doi: 10.1007/s10344-016-1011-3.

17. Абдукаримова Н. У. Морфометрическая характеристика лимфоидных узелков (пейеровых бляшек) тонкой кишки в онтогенезе / Н. У. Абдукаримова, Х. А. Ганиева, Г. М. Сафарова и др // Universum: медицина и фармакология: электрон. научн. журн. – 2020. – № 2–3 (66).

18. Хасанов Б. Б. Современные представления о структурно-функциональных особенностях пейеровых бляшек / Б. Б. Хасанов // Достижения науки и образования. – 2022. – № 5 (85). – С. 78–87.

19. Morbe U. M. Human gut-associated lymphoid tissues (GALT); diversity, structure, and function / U. M. Morbe, P. B. Jorgensen, T. M. Fenton et. al // Mucosal Immunol. – 2021. – V. 14. – № 4. – P. 793–802. doi: 10.1038/s41385-021-00389-4.

20. Тихонов Е. А. Структурные изменения пейеровых бляшек у самцов крыс Вистар в постнатальном онтогенезе / Е. А. Тихонов, Е. А. Пономаренко, В. А. Мхитаров и др // Морфологические ведомости. – 2014. – Т. 22. – № 1. – С. 85–94. doi: 10.20340/mv-mn.2014.0(1):85-94.

21. Жданова О. Б. Новые методологические решения в патоморфологии гельминтозов / О. Б. Жданова, С. П. Ашихмин, Е. С. Клюкина и др // Российский паразитологический журнал. – 2010. – № 4. – С. 74–82.

22. Duque-Correa M. J. Mammalian intestinal allometry, phylogeny, trophic level and climate / M. J. Duque-Correa, D. Codron, C. Meloro et al // Proc Biol Sci. – 2021. – V. 288 (1944). doi: 10.1098/rspb.2020.2888.

23. Lovegrove B. G. The allometry of rodent intestines / B. G. Lovegrove // J. Comp. Physiol. B. – 2010. – V. 180. – P. 741–755. doi: 10.1007/s00360-009-0437-2.

24. McGrosky A. Gross intestinal morphometry and allometry in primates / A. McGrosky, C. Meloro, A. Navarrete et.al // Am J Primatol. – 2019. – V. 81. – № 8. doi: 10.1002/ajp.23035.

25. Cain J. W. Mechanisms of thermoregulation and water balance in desert ungulates / J. W. Cain, P. R. Krausman, S. S. Rosenstock et. al // Wildlife Society Bulletin. – 2006. – V. 34. – P. 570–581. doi: 10.2193/0091-7648(2006)34[570:MOTAWB] 2.0.CO;2.