Определение репродуктивного потенциала у ремонтных телок

Воспроизводство и выбраковка продуктивных животных являются основными факторами, которые влияют на численность коров в стаде. Своевременное определение фертильности у ремонтного молодняка с последующей выбраковкой проблемных телок будет способствовать снижению прямых экономических потерь при разведении молочного скота. При постановке диагноза ветеринарные специалисты должны исключить все формы временного или постоянного бесплодия, в т. ч. врожденные аномалии (инфантилизм, фримартинизм, уродства и т.д.)

С целью установления гормонального статуса телок-фримартин в сыворотке крови определены концентрации половых гормонов (прогестерон, эстрадиол-17ᵦ, тестостерон) и антимюллерова гормона (АМГ).

Проведённые исследования уровня АМГ с помощью иммуноферментного анализа в сыворотке крови доказали возможность ранней оценки фертильности у тёлок. Этот метод позволит провести раннюю выбраковку телок-фримартинов из продуктивного стада. Изучение уровня АМГ показало, что его количество напрямую коррелирует с фертильностью крупного рогатого скота вне зависимости от периода эстрального цикла. При концентрации АМГ в сыворотке крови ниже 100 пг/мл телки не способны к плодотворному осеменению, тогда как высокий уровень антимюллерова гормона (более 380 нг/мл) позволяет успешно оплодотворять животных с первой попытки. Весь клинически здоровый полученный при одноплодной стельности ремонтный молодняк был успешно осеменен. При сниженных концентрациях антимюллерова гормона телки-фримартины оказались бесплодными даже после проведения гормональной стимуляции (Со-Synx) и введения спермодоз без клинического проявления половой охоты.

Введение тестирования на уровень АМГ методом ИФА в обязательную гинекологическую диспансеризацию крупного рогатого скота в животноводческих предприятиях является целесообразным и эффективным.

1. Федотов С. В. Симптоматическое бесплодие коров, вызванное половыми инфекциями / С. В. Федотов, В. П. Дегтярев, Г. М. Удалов // Ветеринария. – 2015. – № 5. – С.36-39.

2. Федотов С. В. Диагностика и профилактика симптоматического бесплодия у коров / С. В. Федотов, Н. С. Белозерцева, И. М. Яхаев // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. – 2016. – №11. – С. 118-123.

3. Авдеенко В. С. Биотехника воспроизводства с основами акушерства животных // В. С. Авдеенко, С. В. Федотов. - М.: Инфра-М. 2016. – 455 с.

4. Durlinger A. L. Anti-Mullerian hormone inhibits initiation of primordial follicle growth in the mouse ovary / A. L. Durlinger, M. J. Gruijters, P. Kramer [et al.] // Endocrinology. – 2002. – Vol. 143. – P. 1076-1084.

5. Yang M. Y. Anti-Mullerian hormone inhibits activation and growth o f bovine ovarian follicles in vitro and is localized to growing follicles / M. Y. Yang, R. A. Cushman, J. E. Fortune // Mol Hum Reprod. – 2017. – Vol. 2. – Р. 282-291.

6. Pellatt L. Granulosa cell production of anti-Mullerian hormone is increased in polycystic ovaries / L. Pellatt, L. Hanna, M. Brincat [et al.] // J. Clin. Endocrinol. Metabol. – 2007. – Vol. 92. – P. 240-245.

7. Nilsson E. E. Inhibitory Actions of Anti-Mullerian Hormone (АМН) on Ovarian Primordial Follicle Assembly / E. E. Nilsson, R. Schindler, M. I. Savenkova, M. K. Skinner // PLoS One. – 2011. – Vol. 6. – №5. – P. 20087.

8. Kavya K. M. Anti-Mullerian hormone and antral follicular count in early and delayed pubertal Murrah buffalo heifers / K. M. Kavya, R. K. Sharma, A. Jerome, S. K. Phulia, I. Singh // Livestock Science. – 2017. – №198. – P. 89-92

9. Fleming R. Metformin reduces serum Mullerian-inhibiting substance levels in women with polycystic ovary syndrome after protracted treatment / R. Fleming, L. Harborne, D. T. MacLaughlin [et al.] // Fertility and Sterility. – 2005. – Vol. 83. – P. 130-136.

10. Grossman M. Miillerian inhibiting substance inhibits cytochrome P450 aromatase activity in human granulosa lutein cell culture / M. Grossman, S. Nakajima, M. Fallat, Y. Siow // Fertility and Sterility. – 2008. – Vol. 89. – P. 1364-1370.