Preview

Генетика и разведение животных

Расширенный поиск
Доступ открыт Открытый доступ  Доступ закрыт Только для подписчиков

Воздействие этанола на некоторые гематологические показатели австралийского красноклешневого рака (Cherax quadricarinatus)

https://doi.org/10.31043/2410-2733-2021-4-85-91

Полный текст:

Аннотация

Цель: изучение влияние этанола на показатели ОЧГ, процентное содержание гранулоцитов и общего белка в гемолимфе австралийского красноклешневого рака (Cherax quadricarinatus).

Материалы и методы. Объектом данного опыта являлись 26 самцов австралийского красноклешневого рака (Cherax quadricarinatus) массой от 23 до 83 г. Особей равномерно распределили на две группы опытную – с инъекцией этанола и контрольную без инъекции по 13 раков на каждую группу. Доза инъекции составляла 2515 мг на 100 г массы тела. Через сутки после введения этанола отбирали гемолимфу шприцом из вентрального синуса, шприц предварительно промывался 4 %-м раствором Трилона-Б. Проводили определение трех показателей: общее число гемоцитов (ОЧГ), доля гранулоцитов и общее содержание белка. Подсчёт гемоцитов и определение доли гранулоцитов производили в камере Горяева под световым микроскопом. Общий белок определяли рефрактометрическим методом.

Результаты. Различия по ОЧГ и общему белку между группами были статистически не достоверны (p>0,05). ОЧГ в экспериментальной группе на 36 % больше, чем в контрольной. Общий белок после введения этанола увеличился фактически на 0,7 %, а относительно на 14 %. Статистически различались показатели доли гранулоцитов (p<0,05) – среднее значение 33,1 % в экспериментальной группе против 24,5 % в контрольной. Выявлена достоверная (p<0,05) обратная связь между общим белком и массой особей в обеих опытных группах, при этом в экспериментальной имеется видимое смещение значений зависимых показателей гемолимфы в сторону увеличения у особей меньших размеров.

Заключение. Однократное введение этилового спирта с дозировкой 2515 мг на 100 г массы тела в гемолимфу C. quadricarinatus не вызывает достоверных изменений ОЧГ и общего белка спустя 24 часа. При этом достоверно возрастает фактически на 9 %, относительно на 37 %, доля гранулоцитов. Это дает право предполагать, что гранулоциты участвуют в формировании защитных механизмов рака при воздействии токсичных веществ. Влияние различных дозировок инъекций этанола и длительности его воздействия на гематологические показатели требует дополнительного рассмотрения. Необходимо исследовать его влияние на другие показатели, такие как pH, и буферная ёмкость гемолимфы, концентрация гемоцианина, глюкозы, лактатов и кальция.

Об авторах

Д. Н. Скафарь
ФГБОУ ВО «Кубанский государственный университет», факультет – биологический, кафедра – водные биоресурсы и аквакультура
Россия

Скафарь Денис Николаевич – студент

350040, г. Краснодар, ул. Димитрова, 172, к. 218



Д. В. Шумейко
ФГБОУ ВО «Кубанский государственный университет», факультет – биологический, кафедра – водные биоресурсы и аквакультура
Россия

Шумейко Дмитрий Валентинович – аспирант

350040, г. Краснодар, ул. Димитрова, 172, к. 218



Список литературы

1. Зиматкин С. М. Гистаминергические нейроны мозга крысы после однократного воздействия этанола: сравнение эффектов малой и большой доз / С. М. Зиматкин, Е. М. Федина, О. В. Анищик // Журнал Гродненского государственного медицинского университета. – 2016. – № 1. – C. 55-59.

2. Davis J. R. Effects of developmental exposure to ethanol on caenorhabditis elegans / J. R. Davis, Y. Li, C. H. Rankin // Alcoholism: clinical and experimental research. – 2008. – V. 32. – P. 853-867. https://doi.org/10.1111/j.1530-0277.2008.00639.x

3. Lonnie O. I. Ethanol tolerance in bacteria / O. I. Lonnie // Critical Reviews in Biotechnology. – 1990. – V. 9. – I. 4. https://doi.org/10.3109/07388558909036741

4. Salonen I. Exposure to ethanol during capacitation impairs the fertilizing ability of human spermatozoa in vitro / I. Salonen // Int J Androl. – 1986. – P. 259-270. https://doi.org/10.1111/j.1365-2605.1986.tb00889.x

5. Obe G. Genetic effects of ethanol / G. Obe, D. Anderson // Mutation research/reviews in genetic toxicology. – 1987. – V. 186. – I. 3. – P. 177-200. https://doi.org/10.1016/0165-1110(87)90003-0

6. Ловать М. Л. Моделирование алкогольной интоксикации на рыбах Brachidanio rerio: преимущества и ограничения / М. Л. Ловать, О. А. Аверина, В. В. Павшинцев // Russian Scientist. – 2017. – Т. 1. – № 2(2). – С. 37-38.

7. Fernandes Y. Long-term behavioral changes in response to early developmental exposure to ethanol in zebrafish / Y. Fernandes, R. Gerlai // Alcohol Clin Exp Res. – 2009. – V. 33. – № 4. – P. 601-609. https://doi.org/10.1111/j.1530-0277.2008.00874.x

8. Gerlai R. Drinks like a fish: zebra fish (Danio rerio) as a behavior genetic model to study alcohol effects / R. Gerlai, M. Lahav, S. Guo, A. Rosenthal // Pharmacology, biochemistry, and behavior. – 2001. – V. 67. – I. 4. – P. 773-782. https://doi.org/10.1016/S0091-3057(00)00422-6

9. Ramlan N. F. Time dependent effect of chronic embryonic exposure to ethanol on zebrafish: Morphology, biochemical and anxiety alterations / N. F. Ramlan, N. S. A. M. Sata, S. N. Hassan, N. A. Bakar, S. Ahmad, S. Z. Zulkifli, C. A. C. Abdullah, W. N. W. Ibrahim // Behavioural Brain Research. – 2017. – V. 332. – P. 40-49. http://dx.doi.org/10.1016/j.bbr.2017.05.048

10. Молнар K. Практическое руководство по заболеваниям тепловодных рыб в Центральной и Восточной Европе, на Кавказе и в Центральной Азии. Информационный бюллетень / K. Молнар, Ч. Секели, M. Ланг // Информационный бюллетень ФАО по рыболовству и аквакультуре. – 2020. – №1182. – Анкара. –. 113 c. https://doi.org/10.4060/ca4730ru

11. Altun T. Effects of short and long exposure to the anesthetic 2- phenoxyethanol mixed with ethyl alcohol on common carp (Cyprinus carpio L) fingerlings / T. Altun, D. Danabas // The Israeli Journal of Aquaculture – Bamidgeh. – 2006. – V. 58. – I. 3. – P. 178-182.

12. Пронина Г. И. Использование гидробионтов в качестве альтернативных биомоделей / Г. И. Пронина, Н. Ю. Корягина, А. О. Ревякин, О. И. Степанова, Ж. О. Курищенко, Н. В. Петрова // Российский физиологический журнал им. И. М. Сеченова. – 2017. – Т. 103. – № 8. – С. 912-929.

13. Лагуткина Л. Ю. Новый объект тепловодной аквакультуры – австралийский красноклешневый рак (Cherax quadricarinatus) / Л. Ю. Лагуткина, С. В. Пономарев // Вестник АГТУ. – 2008. – № 6. – С. 220-223.

14. Арыстангалиева В. А., Жигин А. В. Австралийский красноклешневый рак (Cherax quadricarinatus) – перспективный объект аквакультуры России // Состояние и пути развития аквакультуры в Российской Федерации в свете импортозамещения и обеспечения продовольственной безопасности страны: материалы национальной научно-практической конференции, Саратов, 4-5 октября 2016 г. Саратов, 2016. С. 5-9.

15. Kumar V. Aquaculture Drugs: sources, active ingredients, pharmaceutic preparations and methods of administration / V. Kumar, S. Roy // Journal of Aquaculture Research & Development. – 2017. – V. 8. – I. 9. doi: 10.4172/2155-9546.1000510

16. Головина Н. А., Стрелков Ю. А., Воронин В. Н., Головин П. П., Евдокимова Е. Б., Юхименко Л. Н. Ихтиопатология. М., 2003. 448 c.

17. Melendre P. M. Effectiveness of antifungal treatments during artificial incubation of the signal crayfish eggs (Pacifastacus leniusculus Dana. Astacidae) / P. M. Melendre, J. D. Celada, J. M. Carral, M. Sáez-Royuela, A. Aguilera // Aquaculture. – 2006. – V. 257. – I. 1-4. – P. 257–265. doi: 10.1016/j.aquaculture.2006.02.064.

18. Söderhäll K. Internal defence mechanisms / K. Söderhäll, V. W. Johansson, V. J. Smith // Freshwater crayfish: biology, management and exploitation. – 1988. – P. 213-238.

19. Иванов А. А., Пронина Г. И., Корягина Н. Ю. Физиология гидробионтов. СПб, 2021. 480 с.

20. Ковачева Н. П. Гематологические показатели как индикаторы физиологического состояния декапод: камчатского краба Paralithodes camtschaticus и речных раков родов Astacus и Pontastacus / Н. П. Ковачева, Е. Н. Александрова // Изд. ВНИРО. М., 2010, 91 с.

21. Johansson M. W. Crustacean haemocytes and haematopoiesis / M. W. Johansson, P. Keyser, K. Sritunyalucksana, K. Soderhall // Aquaculture. – 2000. – V. 191. – P. 45-52.

22. Jussila J. Physiological responses of Astacid and Parastacid crayfishes (Crustacea: Decapoda) to conditions of intensive culture: doctoral dissertation. Kuopio. 1997. 136 p.

23. Иванов А. А. Физиолого-биохимические адаптации речных раков (Astacus astacus) при изменении минерализации водной среды / А. А. Иванов, Н. Ю. Корягина, Г. И. Пронина, А. О. Ревякин // Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. – 2011. – № 3. – С. 120-128.

24. Корягина Н. Ю. Физиолого-биохимическая характеристика речных раков при выращивании в искусственных условиях: дис. … канд. биол. наук. М., 2010. 151 с.

25. Александрова E. Н. Прижизненное определение физиологического статуса десятиногих ракообразных (Сrustacea: Decapoda) по гематологическим показателям / E. H. Александрова, Н. П. Кочева // Успехи физиологических наук. – 2010. – Т. 41. – № 2. – С. 51-67.


Рецензия

Для цитирования:


Скафарь Д.Н., Шумейко Д.В. Воздействие этанола на некоторые гематологические показатели австралийского красноклешневого рака (Cherax quadricarinatus). Генетика и разведение животных. 2021;(4):85-91. https://doi.org/10.31043/2410-2733-2021-4-85-91

For citation:


Skafar D., Shumeyko D. The effect of ethanol on some hematological parameters of the australian red claw crayfish (Cherax quadricarinatus). Genetics and breeding of animals. 2021;(4):85-91. (In Russ.) https://doi.org/10.31043/2410-2733-2021-4-85-91

Просмотров: 61


ISSN 2410-2733 (Print)