Роль кортизола и прогестерона в формировании клеточного состава крови у телок голштинской породы

Цель: количественная оценка клеточного состава крови телочек голштинской породы и изучение взаимосвязи между ним и уровнем стероидных гормонов – кортизола и прогестерона.

Материалы и методы. Работа проводилась в 2020-2021 гг на базе ТОО «Белагаш» (Республика Казахстан), специализирующегося на производстве молока путем использования продуктивного потенциала животных голштинской породы. Рационы кормления животных составлялись в соответствии с нормами ВИЖ. В опытную группу (n=10) были включены телочки, родившиеся весной 2020 года. При её формировании использовали принцип приближенных аналогов. У телочек опытной группы в 3, 6, 9, 12, 15-месячном возрасте получены образцы крови вакуумным методом для проведения морфологических и биохимических исследований. Уровень прогестерона и кортизола определяли в сыворотке крови иммуноферментным методом.

Результаты. Общее количество лейкоцитов в крови животных изменялось в интервале 9,57-12,00 109/л, соответствуя границам нормы; уровень моноцитов и лимфоцитов колебался в пределах 3,33-7,80 и 58,93- 75,01 %, составляя 0,40-0,81 и 5,64-9,00 109/л. Количество эритроцитов, гемоглобина и гематокрита к 15-месячному возрасту увеличивался на 36,33; 12,93 и 40,18 %. При этом объемные характеристики эритроцитов (средний объем эритроцита, индекс распределения эритроцитов по объему) практически не зависели от возраста, а вот их насыщаемость гемоглобином (среднее содержание гемоглобина в эритроците, средняя концентрация гемоглобина в эритроците) уменьшалась. Уровень стероидных гормонов – прогестерона и кортизола в крови телочек с возрастом увеличивались в 46,06 и 8,24 раза (р≤0,05). При этом концентрация кортизола статистически значимо коррелировала с количеством эритроцитов (r=0,71 - 0,95), величиной индекса распределения эритроцитов по объему (r=0,74 - 0,98) и абсолютным числом лимфоцитов (r=0,71 - 0,99). Уровень прогестерона, начиная с 9-месячного возраста, был взаимосвязан с общим количеством лейкоцитов (r= -0,63 ‒ -0,88), абсолютным числом моноцитов (r=0,69 ‒ 0,89) и лимфоцитов (r=-0,65 ‒ -0,87), а также эритроцитов (r=0,82 ‒ 0,93) и гемоглобина (r=0,63 ‒ 0,73).

1. Aurich K. Label-free on chip quality assessment of cellular blood products using real-time deformability cytometry / K. Aurich, B. Fregin, R. Palankar, J. Wesche, O. Hartwich, D. Biedenweg, T.H. Nguyen, A. Greinacher, O. Otto // Lab Chip. – 2020. – Vol. 20(13). – Р. 2306–2316.

2. Yuan Y. Tissue-Specific Rhythmic Recruitment Pattern of Leukocyte Subsets / Y. Yuan, S. Wu, W. Li, W.A. He // FrontImmunol. – 2020. – Vol. 11. – Р.1–8

3. Sperandio M. The expanding role of α2-3 sialylation for leukocyte trafficking in vivo / M. Sperandio // Ann N Y Acad Sci. – 2012. – Vol. 1253. – Р.201–215.

4. Song C. Z. Erythrocyte-based analgesic peptides / C. Z. Song, Q. W. Wang, C. C. Song // Regul Pept. – 2013. – Vol. 180. – Р. 58–61.

5. Yanich T. V. Hemostatic Profile of Holstein Heifers Depending on Age / T. V. Yanich, M. A. Derkho, A. Tegza // International Transaction Journal of Engineering, Management, & Applied Sciences & Technologies. – 2022. – Vol. 13(1). – Р.2–11.

6. Kim Y. M. Reference ranges of hematology and lymphocyte subsets in healthy Korean native cattle (Hanwoo) and Holstein dairy cattle / Y. M. Kim, J. A. Lee, B. G. Jung, T. H. Kim, B. J. Lee, G. H. Suh // Anim Sci J. – 2016. – Vol. 87(6). – Р. 796–801.

7. Сорокина С. А. Эритроциты и особенности взаимосвязи их уровня с металлами и металлоидами в организме телочек / С. А. Сорокина, М. А. Дерхо / Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н. Э. Баумана. – 2022. – Т. 249. – № 1. – С. 197–204.

8. Gunter S. A. Effects of supplementary selenium source on the performance and blood measurements in beef cows and their calves / S. A. Gunter, P. A. Beck, J. K. Phillips // J. Anim Sci. – 2003. – Vol. 81(4). – Р. 856–64.

9. Монгалев Н. П. Функциональная значимость лейкоцитоза в эстральном цикле коров / Н. П. Монгалев, М. Ф. Борисенков // Актуальные вопросы ветеринарии. – 2016. – Т. 4. – №32. – С.3–8.

10. Funasaka N. Long-term monitoring of circulating progesterone and its relationship to peripheral white blood cells in female false killer whales Pseudorca crassidens / N. Funasaka, M. Yoshioka, K. Ueda, H. Koga, M. Yanagisawa, S. Koga, K. Tokutake // J Vet Med Sci. –2018. –Vol. 80(9). – Р. 1431–1437

11. Licinio J. The neuroimmune-endocrine axis: pathophysiological implications for the central nervous system cytokines and hypothalamus-pituitary-adrenal hormone dynamics / J. Licinio, P. Frost // Braz J Med Biol Res. – 2000. – Vol. 33(10). –Р. 141–148.

12. Ogawa K. The effect of cortisol, progesterone, and transcortin on phytohemagglutinin-stimulated human blood mononuclear cells and their interplay / K. Ogawa, K. Sueda, N. Matsui // JClinEndocrinolMetab. – 1983. – Vol. 56(1). – Р. 121–126.

13. Irimia D. Big insights from small volumes: deciphering complex leukocyte behaviors using microfluidics / D. Irimia, F. Ellett // J Leukoc Biol. – 2016. – Vol. 100(2). – Р.291–304.

14. Sawyer G. Measuring wool cortisol and progesterone levels in breeding maiden Australian merino sheep (Ovisaries) / G. Sawyer, D. Webster, E. Narayan // PLoS One. – 2019. – Vol. 14(4). – Р.1–9.

15. След А. Н. Лейкоциты и особенности их взаимосвязей с кортизолом и прогестероном в организме сухостойных коров / А. Н. След, М. А. Дерхо // Известия ОГАУ. – 2019. – № 1(75). – С. 133–136.

16. Caroprese M. Relationship between cortisol response to stress and behavior, immune profile, and production performance of dairy ewes / M. Caroprese, M. Albenzio, A. Marzano, L. Schena, G. Annicchiarico, A. Sevi // J Dairy Sci. – 2010. – Vol. 93(6). –Р. 2 395-403.

17. Kamisoglu K. Effects of coupled dose and rhythm manipulation of plasma cortisol levels on leukocyte transcriptional response to endotoxin challenge in humans / K. Kamisoglu, K. Sleight, T. T. Nguyen, S. E. Calvano, S. M. Coyle, S. A. Corbett, I. P. Androulakis // Innate Immun. – 2014. – Vol. 20(7). – Р.774–84.

18. Ndiaye K. Progesterone effects on lymphocytes may be mediated by membrane progesterone receptors / K. Ndiaye, D. H. Poole, S. Walusimbi, M. J. Cannon, K. Toyokawa, S. W. Maalouf, J. Dong, P.Thomas, J. L. Pate // J Reprod Immunol. –2012. – Vol. 95(1-2). – Р. 15-26.