Показатели обмена веществ у кур разного возраста и при разном репродуктивном состоянии

Снижение репродуктивного потенциала кур к концу первого продуктивного периода тесно связано с биологическим процессом старения яичников. В то же время функционирование воспроизводительной системы определяется интенсивностью и направленностью обменных процессов в организме самок.

Цель: изучить связь между биохимическими маркерами состояния обмена веществ и проявлением возрастного снижения яйценоскости у домашних кур.

Материалы и методы. Нами проведено сравнительное исследование биохимических показателей крови у молодых кур-несушек с длинными циклами яйцекладки (МДЦ, n=17) и у кур среднего возраста при разном репродуктивном состоянии: с длинными циклами яйцекладки (СДЦ, n=10), с ановуляторными длинными циклами (САДЦ, n=9), с короткими циклами (СКЦ, n=15) и с короткими циклами после линьки (СКЦ Л, n= 9). Биохимические показатели крови определяли одновременно во всех образцах на автоматическом биохимическом анализаторе.

Результаты. Концентрация общего белка в плазме крови у молодых птиц была в 1,2 раза ниже (p<0,01 0,05), чем у постаревших птиц в трех группах (СДЦ, СКЦ и СКЦ-Л). Содержание компонентов липидного обмена в крови кур разного возраста и репродуктивного статуса не различалось. У молодых птиц актив ность аланинаминотрансферазы в крови была в 1,5 раза выше (p<0,05), чем у кур после линьки (СКЦ-Л), а коэффициент де Ритиса — в 1,4 раза ниже (p<0,05), чем у кур группы СДЦ. В то же время у постаревших особей в группах СДЦ и СКЦ-Л уровни фосфора и железа были в 1,4 раза выше (p<0,01—0,05) по сравнению с таковыми у особей в группах МДЦ (фосфор) и СКЦ (железо).

Заключение. Полученные данные свидетельствуют о том, что у кур-несушек с возрастом происходило повышение содержания общего белка в крови, которое не зависело от наличия признаков репродуктивного старения. Кроме того, они указывают на изменения компенсаторного характера показателей минерального обмена и активности аминотрансфераз у постаревших кур, сохраняющих высокую интенсивность яйцекладки, а также у птиц, возобновивших яйцекладку после линьки.

1. Кавтарашвили А. Ш. Рациональный срок использования кур современных кроссов / А. Ш. Кавтарашвили, И. И. Голубов // Птица и птицепродукты. — 2013. — №1. — С. 60—62.

2. Штеле А. Л. Повышение яйценоскости у высокопродуктивных кур и проблема ее раннего прогнозирования / А. Л. Штеле // Сельскохозяйственная биология. — 2014. — Т. 49. — № 6. — С. 26—35. DOI: 10.15389/agrobiology.2014.6.26rus.

3. Lillpers K. Age-dependent changes in oviposition pattern and egg production traits in the domestic hen / K. Lillpers, M. Wilhelmson // Poult. Sci. — 1993. — V. 72. – № 11. — P. 2005—2011. DOI: 10.3382/ps.0722005.

4. Lebedeva I. Y. Age-dependent role of steroids in the regulation of growth of the hen follicular wall / I. Y. Lebedeva, V. A. Lebedev, R. Grossmann, N. Parvizi // Reprod. Biol. Endocrinol. — 2010. — V. 8. – № 1. — P. 15. DOI: 10.1186/1477-7827-8-15.

5. Navara K. J. Higher rates of internal ovulations occur in broiler breeder hens treated with testosterone / K. J. Navara, S. E. Pinson, P. Chary, P.C. Taube // Poult. Sci. — 2015. — V. 94. – № 6. — P. 1346—1352. DOI: 10.3382/ps/pev103.

6. Liu X. Grape seed proanthocyanidin extract prevents ovarian aging by inhibiting oxidative stress in the hens / X. Liu, X. Lin, Y. Mi, et al. // Oxid. Med. Cell. Longev. — 2018. — V. 2018. ID 9390810. DOI: 10.1155/2018/9390810.

7. Фисинин В. И. О физиологических и морфологических процессах в организме птицы при естественной и принудительной линьке / В. И. Фисинин, А. П. Коноплёва // Сельскохозяйственная биология. — 2015. — Т. 50. — № 6. — С. 719—728. DOI: 10.15389/agrobiology.2015.6.719rus.

8. Berry W. D. The physiology of induced molting / W. D. Berry // Poult. Sci. — 2003. — V. 82. – No. 6. — P. 971—980. DOI: 10.1093/ps/82.6.971.

9. Tesarik J. Ovarian aging: molecular mechanisms and medical management / J. Tesarik, M. Galán-Lázaro, R. Mendoza-Tesarik // Int. J. Mol. Sci. — 2021. — V. 22. – No. 3. — P. 1371. DOI: 10.3390/ijms22031371.

10. Hao E.Y. Melatonin regulates the ovarian function and enhances follicle growth in aging laying hens via activating the mammalian target of rapamycin pathway / E.Y. Hao, H. Chen, D.H. Wang, et al. // Poult. Sci. — 2020. — V.99. – No. 4. — P. 2185—2195. DOI: 10.1016/j.psj.2019.11.040.

11. Athar F. Metabolic hormones are integral regulators of female reproductive health and function / F. Athar, M. Karmani, N.M. Templeman // Biosci. Rep. — 2024. — V.44. – No. 1. BSR20231916. DOI: 10.1042/BSR20231916.

12. D'Occhio M.J. Influence of nutrition, body condition, and metabolic status on reproduction in female beef cattle: a review / M.J. D'Occhio, P.S. Baruselli, G. Campanile // Theriogenology. — 2019. — V. 125. — P. 277—284. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2018.11.010.

13. Вертипрахов В.Г. Морфо-биохимические исследования крови у сельскохозяйственной птицы: учеб. пособие / под ред. В.Г. Вертипрахова // Дальневосточный государственный аграрный университет, Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт птицеводства РАН. Благовещенск: Дальневосточный ГАУ. — 2021. — 134 с.

14. Dong X.Y. Effects of rearing systems on laying performance, egg quality, and serum biochemistry of Xianju chickens in summer / X.Y. Dong, Z.Z. Yin, Y.Z. Ma, et al. // Poult. Sci. - 2017. - V.96. – No.11. — P. 3896—3900. DOI: 10.3382/ps/pex155.

15. Elkomy H. S. Use of lactulose as a prebiotic in laying hens: its effect on growth, egg production, egg quality, blood biochemistry, digestive enzymes, gene expression and intestinal morphology / H. S. Elkomy, I. I. Koshich, S. F. Mahmoud, M. I. Abo-Samaha // BMC Vet. Res. — 2023. — V. 19. – No. 1. — P. 207. DOI: 10.1186/s12917-023-03741-x.

16. Середа Т. И. Оценка роли аминотрансфераз в формировании продуктивности у курнесушек / Т. И. Середа, М. А. Дерхо // Сельскохозяйственная биология. — 2014. — Т. 49. — № 2. — С. 72—77.

17. Etches R. J. Changes in the plasma concentrations of luteinizing hormone, progesterone, oestradiol and testosterone and in the binding of follicle-stimulating hormone to the theca of follicles during the ovulation cycle of the hen (Gallus domesticus) / R. J. Etches, K. W. Cheng // J. Endocrinol. — 1981. — V.91. – No.1. — P. 11—22. DOI: 10.1677/joe.0.0910011.

18. Kraus A. Determination of selected biochemical parameters in blood serum and egg quality of Czech and Slovak native hens depending on the housing system and hen age / A. Kraus, L. Zita, O. Krunt, et al. // Poult. Sci. — 2021. — V.100. – No. 2. — P. 1142—1153. DOI: 10.1016/j.psj.2020.10.039.

19. Salahuddin M. Enhancing laying hens' performance, egg quality, shelf life during storage, and blood biochemistry with Spirulina platensis supplementation / M. Salahuddin, A.A.A. Abdel-Wareth, K.G. Stamps, et al. // Vet. Sci. — 2024. — V.11. – No. 8. — P. 383. DOI: 10.3390/vetsci11080383.

20. Yan F. The role of oxidative stress in ovarian aging: a review. / F. Yan, Q. Zhao, Y. Li, et al. // J. Ovarian Res. — 2022. – V.15. – No.1. – P.100. DOI: 10.1186/s13048-022-01032-x.

21. Wróblewski M. The role of selected trace elements in oxidoreductive homeostasis in patients with thyroid diseases / M. Wróblewski, J. Wróblewska, J. Nuszkiewicz, et al. // Int. J. Mol. Sci. — 2023. — V.24. – No. 5. — P. 4840. DOI: 10.3390/ijms24054840.

22. Лебедева И. Ю. Возрастные изменения содержания в крови микроэлементов, связанных с активностью тиреоидной системы у кур-несушек / И.Ю. Лебедева, О.С. Митяшова, О.В. Алейникова, и др. // Зоотехния. — 2024. — № 11. — С. 27—30. DOI: 10.25708/ZT.2024.66.29.007.